注意:DNA在紫外灯下的曝光的时间不要超过30秒，同时在紫外灯下操作的时候一定要戴?；ぱ劬怠?/div>
3、称取空离心管的重量，切下带目的片段的凝胶装在1.5ml离心管中并称其重量，求出凝胶块的重量，近似地确定其体积。一般情况下，凝胶的密度为1g/ml，于是凝胶的体积与重量的关系可按下面换算:凝胶薄片的重量为0.2g则其体积为0.2ml;加入等倍凝胶体积的BindingBuffer，把混合物置于55℃~65℃水浴中温浴7min至凝胶*融化，其间每隔2-3分钟混匀一次;
重要提醒:在凝胶*溶解之后，注意凝胶-BindingBuffer混合物的pH值。如果其pH值大于8的话，DNA的产量将大大减少。观察混合物的颜色，如果是橙色或红色，则要加入5μl浓度为5M，pH为5.2的醋酸钠，以调低其pH值。经过这一调节，该混合物的颜色将恢复为正常的浅黄色。一般情况下，使用新鲜的电泳缓冲液，凝胶-Bindingbuffer混合物的PH值的不会升高;
4、转移700μl的DNA-琼脂糖溶液到一个HiBindTMDNA柱子，并把柱子装在一个干净的2ml收集管内，室温下，10,000×g离心1min，弃去液体。
一个HiBindDNA柱子最多可容纳700μl的溶液，如果DNA-琼脂糖混合物的体积大于700μl，可先转移700μl溶液至柱子，离心完后，将余下的溶液继续加上柱子上。但是每一个HiBindTM柱子最多可以结合25~30μgDNA。如果预期产量较大，则把样品分别加到合适数目的柱中。
5、将柱子重新套回收集管中，加300μlBindingBuffer至HiBindDNA柱子中;室温下，10,000×g离心1分钟，去弃滤出液;这一步相当关键，不要忽略此步。
6、将柱子重新套回收集管中，加入700μlSPWWashbuffer至HiBindDNA柱子中，室温下，10,000×g离心1分钟，去弃滤出液;注:SPWWashbuffer在使用前必须按瓶子标鉴要求用无水乙醇进行稀释。
7、将柱子重新套回收集管中，重复加入700μlSPWWashbuffer至HiBindDNA柱子中，室温下，10,000×g离心1分钟，去弃滤出液;
8、弃去液体，将空柱子重新套回收集管中，10,000×g离心1min以甩干柱基质残余的液体。
这步可以去除柱子基质上残余的乙醇，不要省略此步―――对得到好的DNA产量是十分重要的。
9、把柱子装在一个干净的1.5ml离心管上，加入30~50μl洗脱液或灭菌水上柱子膜上，10,000×g离心1分钟，离心管中的溶液就是纯化的DNA产物，保存于-20度。
